Kromatografi: Panduan Lengkap Prinsip & Aplikasi Analisis

Ilustrasi skematis proses kromatografi: sebuah kolom berisi fase diam, sampel disuntikkan dan terpisah menjadi beberapa pita warna saat bergerak bersama fase gerak, dan hasilnya divisualisasikan sebagai kromatogram dengan puncak-puncak yang terpisah berdasarkan waktu retensi.

Kromatografi adalah salah satu teknik pemisahan analitis paling penting dan serbaguna dalam ilmu pengetahuan modern. Dari laboratorium riset hingga industri farmasi, dari analisis lingkungan hingga pemeriksaan kualitas makanan, kromatografi menyediakan alat yang tak ternilai untuk mengidentifikasi, mengukur, dan memurnikan berbagai macam komponen dalam campuran kompleks. Teknik ini memungkinkan para ilmuwan untuk memecah campuran menjadi konstituen individualnya, bahkan ketika perbedaan fisik atau kimia antar komponen sangat kecil. Prinsip dasarnya elegan namun kuat: pemisahan dicapai melalui perbedaan kecepatan migrasi komponen sampel antara dua fase yang tidak dapat bercampur, yaitu fase diam (stationary phase) dan fase gerak (mobile phase).

Sejak penemuannya pada awal abad ke-20, kromatografi telah berkembang pesat dari metode yang sederhana menjadi rangkaian teknik yang sangat canggih dan terotomatisasi. Evolusi ini telah memungkinkan analisis yang semakin cepat, sensitif, dan spesifik, membuka pintu bagi penemuan ilmiah baru dan aplikasi praktis yang tak terhitung jumlahnya. Artikel ini akan mengulas secara mendalam prinsip dasar kromatografi, berbagai jenisnya, komponen utama dari sistem kromatografi, mekanisme pemisahan yang terlibat, serta aplikasi luasnya dalam berbagai bidang ilmu dan industri. Kami akan menjelajahi bagaimana setiap teknik kromatografi memanfaatkan interaksi yang berbeda antara analit dan fase untuk mencapai pemisahan yang optimal.

1. Sejarah Singkat Kromatografi

Konsep dasar kromatografi pertama kali diperkenalkan oleh ahli botani Rusia Mikhail Tsvet pada tahun 1906. Tsvet menggunakan teknik ini untuk memisahkan pigmen tumbuhan, seperti klorofil dan karotenoid, dari ekstrak daun. Ia mengisi kolom kaca dengan kalsium karbonat (fase diam) dan melewatkan ekstrak tumbuhan yang dilarutkan dalam pelarut organik (fase gerak) melaluinya. Hasilnya, pigmen-pigmen tersebut terpisah menjadi pita-pita berwarna yang berbeda di sepanjang kolom, dari sinilah istilah "kromatografi" berasal, dari bahasa Yunani chroma (warna) dan graphein (menulis).

Meskipun penemuan Tsvet sangat inovatif, teknik kromatografi tetap relatif diabaikan selama beberapa dekade. Kebangkitan minat dan pengembangan signifikan terjadi pada tahun 1940-an dengan karya Archer J.P. Martin dan Richard L.M. Synge. Mereka mengembangkan kromatografi partisi, yang memungkinkan pemisahan senyawa tidak berwarna, dan membuka jalan bagi kromatografi kertas dan kromatografi gas. Atas kontribusi mereka, Martin dan Synge dianugerahi Hadiah Nobel Kimia pada tahun 1952. Penemuan ini menandai titik balik penting, mengubah kromatografi dari metode visual yang spesifik menjadi alat analitis universal.

Pada paruh kedua abad ke-20, kromatografi terus berkembang pesat. Kromatografi gas (GC) muncul sebagai teknik yang sangat kuat untuk senyawa volatil, diikuti oleh kromatografi cair kinerja tinggi (HPLC) yang merevolusi analisis senyawa non-volatil dan termolabil. Inovasi dalam bahan fase diam, detektor, dan sistem instrumentasi otomatis telah mendorong kromatografi menjadi salah satu pilar utama kimia analitik modern. Saat ini, ada berbagai macam teknik kromatografi yang tersedia, masing-masing disesuaikan untuk kebutuhan pemisahan tertentu, mulai dari pemisahan biomolekul kompleks hingga analisis jejak kontaminan di lingkungan.

2. Prinsip Dasar Kromatografi

Inti dari setiap teknik kromatografi adalah konsep pemisahan komponen campuran berdasarkan perbedaan afinitas atau interaksi mereka dengan dua fase: fase diam dan fase gerak. Setiap komponen dalam sampel akan menghabiskan waktu yang berbeda di fase diam dan fase gerak, yang menyebabkan mereka bergerak melalui sistem dengan kecepatan yang berbeda dan akhirnya terpisah.

2.1. Fase Gerak (Mobile Phase)

Fase gerak adalah fase yang bergerak melalui sistem kromatografi, membawa sampel bersamanya. Fase ini dapat berupa gas, cairan, atau fluida superkritis. Sifat fase gerak sangat mempengaruhi pemisahan, karena ia berinteraksi dengan analit dan fase diam. Pemilihan fase gerak yang tepat sangat penting untuk mencapai resolusi yang baik.

2.2. Fase Diam (Stationary Phase)

Fase diam adalah fase yang tidak bergerak dan tetap berada di dalam kolom atau pada permukaan planar. Fase ini dapat berupa padatan, cairan yang terikat pada padatan, atau gel. Interaksi antara analit dan fase diam adalah kunci utama dalam proses pemisahan. Sifat kimia dan fisik fase diam—seperti polaritas, ukuran pori, dan gugus fungsional yang terikat—akan menentukan bagaimana analit berinteraksi dengannya.

2.3. Mekanisme Pemisahan

Pemisahan dalam kromatografi didasarkan pada perbedaan laju migrasi komponen sampel yang disebabkan oleh interaksi selektif dengan fase diam dan fase gerak. Ada beberapa mekanisme pemisahan utama:

2.3.1. Kromatografi Adsorpsi

Dalam kromatografi adsorpsi, analit bersaing dengan molekul fase gerak untuk situs aktif pada permukaan fase diam padat. Pemisahan terjadi berdasarkan perbedaan kekuatan adsorpsi analit pada permukaan fase diam. Analit yang memiliki afinitas lebih kuat terhadap fase diam akan tertahan lebih lama, sedangkan analit dengan afinitas lebih lemah akan bergerak lebih cepat bersama fase gerak. Contoh fase diam yang umum adalah silika gel dan alumina. Teknik ini sering digunakan dalam kromatografi kolom klasik dan kromatografi lapis tipis (TLC).

2.3.2. Kromatografi Partisi

Kromatografi partisi melibatkan pembagian analit antara dua fase cair yang tidak dapat bercampur. Fase diam adalah lapisan cairan yang terikat atau teradsorpsi pada permukaan padatan inert, dan fase gerak adalah cairan lain. Pemisahan terjadi karena perbedaan koefisien partisi (kelarutan relatif) analit antara kedua fase cair tersebut. Analit yang lebih larut dalam fase gerak akan elusi lebih cepat, sedangkan yang lebih larut dalam fase diam akan tertahan lebih lama. Kromatografi partisi adalah dasar dari banyak teknik kromatografi cair, termasuk HPLC fase normal dan fase terbalik.

2.3.3. Kromatografi Penukar Ion (Ion Exchange Chromatography - IEC)

IEC memisahkan analit berdasarkan muatan listriknya. Fase diam terdiri dari resin yang mengandung gugus fungsional bermuatan (misalnya, gugus sulfo- untuk penukar kation atau gugus amino- untuk penukar anion). Analit bermuatan dalam fase gerak akan berinteraksi dengan gugus bermuatan pada fase diam melalui interaksi ionik. Pemisahan dicapai dengan mengelusi analit menggunakan fase gerak dengan konsentrasi garam atau pH yang meningkat, yang dapat mengganggu interaksi ionik. Teknik ini sangat efektif untuk pemisahan protein, asam amino, dan molekul bermuatan lainnya.

2.3.4. Kromatografi Eksklusi Ukuran (Size Exclusion Chromatography - SEC) atau Permeasi Gel (Gel Permeation Chromatography - GPC)

SEC memisahkan analit berdasarkan ukurannya. Fase diam adalah matriks berpori dengan ukuran pori yang terkontrol. Molekul yang lebih besar dari ukuran pori akan dieliminasi (dielusi) lebih cepat karena tidak dapat masuk ke dalam pori-pori dan bergerak bebas melalui ruang antar partikel fase diam. Molekul yang lebih kecil dapat masuk ke dalam pori-pori fase diam, sehingga jalur migrasinya lebih panjang dan tertahan lebih lama. Ini adalah metode yang sangat baik untuk memisahkan polimer, protein, dan biomolekul besar lainnya berdasarkan berat molekulnya.

2.3.5. Kromatografi Afinitas

Kromatografi afinitas adalah teknik pemisahan yang sangat spesifik yang memanfaatkan interaksi biospesifik antara analit dan ligan yang terikat pada fase diam. Ligan dapat berupa antibodi, enzim, reseptor, atau molekul lain yang memiliki afinitas tinggi dan spesifik terhadap analit target. Analit target akan berikatan secara reversibel dengan ligan, sementara komponen campuran lainnya yang tidak berinteraksi akan dielusi. Analit target kemudian dielusi dengan mengubah kondisi (misalnya, pH, kekuatan ionik, atau dengan menambahkan molekul kompetitor). Teknik ini ideal untuk pemurnian protein, asam nukleat, dan biomolekul lainnya dengan kemurnian tinggi.

2.4. Waktu Retensi dan Faktor Retensi

Waktu Retensi (Retention Time, tR): Adalah waktu yang dibutuhkan oleh suatu analit untuk bergerak dari titik injeksi hingga mencapai detektor. Setiap analit memiliki waktu retensi karakteristik pada kondisi kromatografi tertentu (fase diam, fase gerak, suhu, laju alir). Waktu retensi adalah parameter kualitatif yang penting untuk identifikasi komponen. Waktu Mati (Dead Time, tM): Adalah waktu yang dibutuhkan oleh komponen yang tidak berinteraksi sama sekali dengan fase diam untuk melewati kolom. Ini mewakili volume fase gerak dalam kolom.

Faktor Retensi (Retention Factor, k'): Juga dikenal sebagai faktor kapasitas, adalah ukuran seberapa lama analit tertahan oleh fase diam relatif terhadap waktu yang dihabiskan dalam fase gerak. Dihitung sebagai: k' = (tR - tM) / tM Nilai k' yang ideal biasanya antara 1 hingga 10 untuk pemisahan yang baik. Nilai k' yang terlalu rendah berarti analit elusi terlalu cepat (sedikit interaksi dengan fase diam), sementara k' yang terlalu tinggi berarti analit tertahan terlalu lama (interaksi kuat dengan fase diam), menyebabkan puncak lebar dan waktu analisis yang lama. Faktor retensi adalah parameter kuantitatif yang penting untuk mengoptimalkan kondisi pemisahan.

3. Klasifikasi Kromatografi

Kromatografi dapat diklasifikasikan berdasarkan beberapa kriteria, seperti sifat fase gerak, sifat fase diam, bentuk sistem kromatografi, dan mekanisme pemisahan. Klasifikasi ini membantu dalam memahami dan memilih teknik yang paling sesuai untuk aplikasi tertentu.

3.1. Berdasarkan Bentuk Sistem Kromatografi

3.2. Berdasarkan Sifat Fase Gerak

3.3. Berdasarkan Mekanisme Pemisahan (telah dijelaskan di atas):

4. Kromatografi Cair (Liquid Chromatography - LC)

Kromatografi cair adalah teknik yang sangat fleksibel untuk memisahkan, mengidentifikasi, dan mengukur komponen dalam campuran yang larut dalam cairan. Ini sangat cocok untuk senyawa non-volatil, termolabil, dan makromolekul. Seiring berjalannya waktu, LC telah berkembang menjadi berbagai sub-tipe yang masing-masing memiliki keunggulan dan aplikasi spesifik.

4.1. Kromatografi Cair Kinerja Tinggi (High-Performance Liquid Chromatography - HPLC)

HPLC adalah bentuk kromatografi cair kolom yang menggunakan tekanan tinggi untuk mendorong fase gerak melalui kolom yang dikemas dengan partikel fase diam berukuran sangat kecil (biasanya 1,7 µm hingga 5 µm). Penggunaan partikel kecil ini menghasilkan resolusi yang jauh lebih baik, efisiensi yang lebih tinggi, dan waktu analisis yang lebih singkat dibandingkan dengan kromatografi cair kolom klasik.

4.1.1. Prinsip dan Komponen HPLC

Prinsip dasar HPLC sama dengan kromatografi partisi umum, tetapi perbedaan utamanya terletak pada penggunaan tekanan tinggi dan kolom berkinerja tinggi. Sistem HPLC terdiri dari beberapa komponen utama:

  1. Reservoir Pelarut: Wadah tempat fase gerak disimpan. Sistem HPLC modern sering memiliki beberapa reservoir untuk mencampur pelarut secara gradien. Pelarut biasanya didegasifikasi untuk mencegah pembentukan gelembung udara yang dapat mengganggu pompa atau detektor.
  2. Pompa (Pumps): Fungsi pompa adalah untuk mengalirkan fase gerak dari reservoir ke kolom dengan laju alir dan tekanan yang stabil dan akurat. Pompa HPLC dapat mencapai tekanan hingga 400 bar (6000 psi) atau lebih tinggi untuk sistem UPLC. Ada dua jenis utama: pompa isokratik (laju alir konstan, komposisi pelarut tetap) dan pompa gradien (komposisi pelarut berubah seiring waktu).
  3. Injektor Sampel (Autosampler/Injector): Sistem injeksi bertanggung jawab untuk memasukkan volume sampel yang diketahui (biasanya mikroliter) ke dalam aliran fase gerak sebelum masuk ke kolom. Injektor manual atau autosampler otomatis dapat digunakan untuk presisi dan throughput yang tinggi.
  4. Kolom (Column): Ini adalah jantung dari sistem HPLC, tempat pemisahan sebenarnya terjadi. Kolom HPLC terbuat dari baja tahan karat dan diisi dengan partikel fase diam. Ukuran dan jenis kolom (misalnya, C18, C8, fenil, cyano, dll.) dipilih berdasarkan sifat analit dan mekanisme pemisahan yang diinginkan. Kolom sering kali ditempatkan dalam oven kolom untuk mengontrol suhu, yang dapat mempengaruhi efisiensi dan selektivitas pemisahan.
  5. Detektor (Detector): Setelah analit terpisah di kolom, mereka melewati detektor yang mengukur properti fisik atau kimia analit dan menghasilkan sinyal listrik yang proporsional dengan konsentrasi analit. Sinyal ini kemudian diubah menjadi kromatogram. Berbagai jenis detektor tersedia, masing-masing dengan keunggulan spesifik.
  6. Sistem Pengumpul Data (Data Acquisition System): Sinyal dari detektor diakuisisi, diproses, dan ditampilkan sebagai kromatogram oleh komputer. Perangkat lunak khusus digunakan untuk analisis puncak, kuantifikasi, dan pelaporan data.

4.1.2. Fase Normal dan Fase Terbalik (Reverse Phase)

Dua mode operasi utama dalam kromatografi partisi cair adalah fase normal dan fase terbalik:

4.1.3. Elusi Isokratik dan Elusi Gradien

Dalam HPLC, ada dua strategi utama untuk mengalirkan fase gerak:

4.1.4. Aplikasi HPLC

HPLC digunakan secara luas di berbagai bidang:

4.2. Kromatografi Cair Ultra-Kinerja Tinggi (Ultra-High-Performance Liquid Chromatography - UPLC)

UPLC adalah evolusi dari HPLC yang menggunakan partikel fase diam yang lebih kecil lagi (umumnya di bawah 2 µm) dan mampu beroperasi pada tekanan yang jauh lebih tinggi (hingga 1000 bar atau 15000 psi). Penggunaan partikel yang lebih kecil menghasilkan peningkatan yang signifikan dalam efisiensi, resolusi, dan kecepatan analisis. UPLC dapat memberikan pemisahan yang lebih baik dalam waktu yang lebih singkat dengan konsumsi pelarut yang lebih rendah dibandingkan HPLC konvensional. Ini sangat berharga dalam aplikasi throughput tinggi seperti skrining obat dan analisis metabolomik.

4.3. Kromatografi Penukar Ion (Ion Exchange Chromatography - IEC)

IEC adalah teknik pemisahan yang didasarkan pada interaksi reversibel antara ion-ion dalam sampel dan gugus bermuatan pada fase diam. Fase diam, atau resin penukar ion, mengandung gugus fungsional yang memiliki muatan tetap. Ada dua jenis utama:

Pemisahan dicapai dengan mengelusi analit menggunakan fase gerak dengan pH atau konsentrasi garam yang berubah. Perubahan pH dapat mengubah muatan analit atau gugus fungsi resin, sedangkan peningkatan konsentrasi garam akan melepaskan analit dari resin karena ion-ion dari garam akan bersaing untuk situs ikatan pada resin. IEC sangat efektif untuk pemurnian protein, peptida, asam nuklelat, asam amino, dan senyawa bermuatan lainnya.

Dalam biokimia, IEC sering digunakan untuk memisahkan protein berdasarkan titik isoelektriknya (pI). Jika protein berada pada pH di bawah pI-nya, ia bermuatan positif dan akan berikatan dengan penukar kation. Sebaliknya, jika protein berada pada pH di atas pI-nya, ia bermuatan negatif dan akan berikatan dengan penukar anion. Dengan memvariasikan pH atau kekuatan ionik eluen, protein dapat dielusi secara selektif.

Aplikasi lain termasuk demineralisasi air, pemurnian bahan kimia, dan analisis ion anorganik dalam sampel lingkungan.

4.4. Kromatografi Eksklusi Ukuran (Size Exclusion Chromatography - SEC) / Permeasi Gel (Gel Permeation Chromatography - GPC)

SEC, yang juga dikenal sebagai GPC ketika digunakan untuk polimer organik, memisahkan molekul berdasarkan ukuran hidrodinamikanya. Fase diam adalah gel berpori yang terbuat dari bahan seperti dekstran, agarosa, poliakrilamida, atau silika. Pori-pori pada gel memiliki rentang ukuran tertentu.

SEC / GPC tidak melibatkan interaksi adsorptif atau partisi antara analit dan fase diam. Pemisahan murni berdasarkan ukuran. Teknik ini sangat berguna untuk:

Keuntungan utamanya adalah kondisi elusi yang relatif lunak, yang cocok untuk biomolekul sensitif.

4.5. Kromatografi Afinitas (Affinity Chromatography)

Kromatografi afinitas adalah teknik pemisahan yang paling spesifik dan berkinerja tinggi, memanfaatkan interaksi biologis yang reversibel antara analit target dan ligan spesifik yang terikat pada fase diam. Ligan ini dapat berupa:

Proses Pemisahan:

  1. Pengikatan (Binding): Sampel dilewatkan melalui kolom. Hanya analit target yang memiliki afinitas terhadap ligan akan terikat pada fase diam. Komponen lain yang tidak spesifik akan melewati kolom.
  2. Pencucian (Washing): Kolom dicuci dengan larutan penyangga untuk menghilangkan semua komponen yang tidak terikat secara non-spesifik.
  3. Elusi (Elution): Analit target dielusi dari fase diam dengan mengubah kondisi lingkungan (misalnya, mengubah pH, meningkatkan konsentrasi garam, menambahkan kompetitor ligan bebas) yang akan mengganggu interaksi spesifik antara analit dan ligan.

Kromatografi afinitas adalah metode pilihan untuk pemurnian protein rekombinan, antibodi monoklonal, dan biomolekul lainnya hingga kemurnian tinggi dalam satu langkah, seringkali dengan hasil yang sangat baik. Meskipun fase diamnya bisa mahal, efisiensi dan spesifisitasnya membenarkan biayanya dalam banyak aplikasi bioteknologi dan farmasi.

5. Kromatografi Gas (Gas Chromatography - GC)

Kromatografi gas adalah teknik pemisahan yang digunakan untuk menganalisis senyawa volatil dan semivolatil. Fase gerak adalah gas inert, dan pemisahan terjadi dalam kolom yang dipanaskan. GC sangat sensitif dan cocok untuk analisis campuran kompleks.

5.1. Prinsip dan Komponen GC

Prinsip GC adalah partisi analit antara fase gerak gas dan fase diam cair yang terlapisi pada padatan inert atau dinding kolom. Sampel diuapkan pada suhu tinggi dan dibawa oleh gas pembawa melalui kolom. Komponen sampel yang lebih volatil atau yang memiliki afinitas lebih rendah terhadap fase diam akan bergerak lebih cepat dan elusi lebih awal.

Sistem GC terdiri dari beberapa komponen kunci:

  1. Tabung Gas Pembawa (Carrier Gas): Sumber gas inert (misalnya, helium, nitrogen, hidrogen, argon) yang berfungsi sebagai fase gerak. Gas ini harus sangat murni.
  2. Pengatur Laju Alir dan Tekanan: Untuk mengontrol laju alir gas pembawa yang konstan melalui sistem.
  3. Injektor Sampel (Injector): Bagian tempat sampel dimasukkan ke dalam aliran gas pembawa. Sampel (cair atau padat) diuapkan dengan cepat pada suhu tinggi (biasanya 200-300°C) di dalam injektor. Ada beberapa jenis injektor, seperti split/splitless injector, on-column injector, dan programmed temperature vaporizer (PTV) injector, yang dipilih berdasarkan sifat sampel.
  4. Kolom (Column): Jantung GC tempat pemisahan terjadi. Kolom ditempatkan di dalam oven yang dapat diprogram suhunya.
    • Kolom Terkemas (Packed Columns): Terbuat dari tabung kaca atau logam yang diisi dengan partikel padat inert yang dilapisi fase diam cair. Panjangnya pendek (1-10 m) dan diameternya besar (2-4 mm). Kurang efisien tetapi memiliki kapasitas sampel yang lebih besar.
    • Kolom Kapiler (Capillary Columns / Open Tubular Columns): Tabung kaca silika cair dengan diameter sangat kecil (0.1-0.5 mm) dan panjang yang jauh lebih panjang (15-100 m). Dinding bagian dalamnya dilapisi dengan lapisan tipis fase diam cair. Kolom kapiler menawarkan efisiensi dan resolusi yang jauh lebih tinggi dan saat ini adalah standar dalam sebagian besar aplikasi GC.
  5. Oven Kolom (Column Oven): Sebuah oven yang dapat dipanaskan secara tepat dan diprogram untuk mengontrol suhu kolom. Suhu konstan (elusi isoterma) digunakan untuk sampel sederhana, sementara peningkatan suhu secara bertahap (elusi gradien suhu) digunakan untuk campuran kompleks dengan rentang volatilitas yang luas.
  6. Detektor (Detector): Setelah keluar dari kolom, komponen yang terpisah melewati detektor yang menghasilkan sinyal listrik. Detektor yang berbeda memiliki selektivitas dan sensitivitas yang berbeda.
  7. Sistem Pengumpul Data: Mirip dengan HPLC, sistem ini mencatat dan memproses sinyal detektor menjadi kromatogram.

5.2. Jenis Detektor GC

Pemilihan detektor sangat krusial dalam GC karena menentukan jenis analit yang dapat dideteksi dan tingkat sensitivitasnya. Beberapa detektor GC yang umum:

5.3. Aplikasi GC

GC memiliki berbagai aplikasi di banyak bidang:

6. Kromatografi Planar

Kromatografi planar adalah teknik pemisahan di mana fase diam dilapisi pada permukaan datar, seperti plat kaca, plastik, atau aluminium. Fase gerak bergerak melalui fase diam oleh aksi kapiler.

6.1. Kromatografi Lapis Tipis (Thin Layer Chromatography - TLC)

TLC adalah teknik kromatografi adsorpsi planar yang cepat, sederhana, dan ekonomis yang digunakan untuk memisahkan senyawa dalam campuran, memantau kemajuan reaksi, memeriksa kemurnian, dan mengidentifikasi senyawa. Fase diamnya adalah lapisan tipis adsorben (paling umum silika gel, alumina, atau selulosa) yang dilapisi pada plat inert (kaca, aluminium, atau plastik).

6.1.1. Prinsip, Material, dan Prosedur TLC

Prinsip: Pemisahan dalam TLC didasarkan pada perbedaan afinitas komponen sampel terhadap fase diam dan fase gerak. Ketika fase gerak merambat naik melalui fase diam secara kapiler, komponen-komponen sampel akan bergerak pada kecepatan yang berbeda. Komponen dengan afinitas lebih kuat terhadap fase diam akan bergerak lebih lambat, sedangkan yang memiliki afinitas lebih kuat terhadap fase gerak akan bergerak lebih cepat.

Material:

Prosedur:

  1. Persiapan Plat: Plat TLC disiapkan atau dibeli siap pakai. Sebuah garis pensil ditarik sekitar 1-2 cm dari bagian bawah plat sebagai garis awal (baseline).
  2. Penotolan Sampel: Sampel yang akan dianalisis dan standar (jika ada) ditotolkan sebagai bintik kecil pada garis awal menggunakan pipet kapiler.
  3. Pengembangan (Development): Plat TLC ditempatkan secara vertikal dalam bejana kromatografi yang telah diisi dengan fase gerak hingga ketinggian di bawah garis awal. Bejana ditutup untuk menjenuhkan atmosfer dengan uap pelarut. Fase gerak merambat naik pada plat oleh aksi kapiler.
  4. Elusi: Saat fase gerak bergerak, komponen sampel terpisah. Proses dihentikan ketika fase gerak mencapai sekitar 1 cm dari bagian atas plat.
  5. Pengeringan: Plat dikeluarkan dari bejana dan dikeringkan untuk menguapkan fase gerak.
  6. Visualisasi: Jika komponen tidak berwarna, diperlukan metode visualisasi.

6.1.2. Visualisasi pada TLC

Setelah elusi dan pengeringan, bintik-bintik hasil pemisahan perlu divisualisasikan:

Faktor Retardasi (Retardation Factor, Rf): Nilai Rf adalah rasio jarak yang ditempuh oleh analit terhadap jarak yang ditempuh oleh fase gerak dari garis awal. Rf = (Jarak yang ditempuh analit) / (Jarak yang ditempuh fase gerak) Nilai Rf adalah karakteristik untuk suatu senyawa pada fase diam dan fase gerak tertentu, dan digunakan untuk identifikasi kualitatif.

6.1.3. Aplikasi TLC

TLC digunakan dalam banyak aplikasi karena kesederhanaan dan biayanya yang rendah:

6.2. Kromatografi Kertas (Paper Chromatography - PC)

Kromatografi kertas adalah bentuk kromatografi partisi planar yang lebih tua, di mana fase diam adalah lapisan tipis air yang teradsorpsi pada serat selulosa kertas kromatografi, dan fase gerak adalah pelarut organik yang merambat melalui kertas. Meskipun sebagian besar telah digantikan oleh TLC karena kecepatan, sensitivitas, dan resolusi yang lebih baik, PC masih memiliki beberapa aplikasi niche, terutama dalam pendidikan dan analisis senyawa yang sangat hidrofilik seperti gula dan asam amino.

7. Detektor dalam Kromatografi

Detektor adalah komponen krusial dalam sistem kromatografi yang bertanggung jawab untuk mendeteksi analit saat mereka elusi dari kolom dan mengubah informasi ini menjadi sinyal listrik yang dapat diukur. Pilihan detektor sangat tergantung pada sifat kimia analit, sensitivitas yang dibutuhkan, dan matriks sampel.

7.1. Detektor dalam Kromatografi Cair (LC)

Seperti disebutkan sebelumnya untuk HPLC, detektor sangat beragam:

7.2. Detektor dalam Kromatografi Gas (GC)

Detektor GC juga telah dibahas secara rinci di bagian GC, meliputi FID, TCD, ECD, MS, NPD, dan FPD. Setiap detektor menawarkan keuntungan unik tergantung pada sifat analit yang ditargetkan.

8. Analisis Data Kromatografi

Output dari sistem kromatografi adalah kromatogram, yaitu grafik yang menggambarkan respons detektor sebagai fungsi waktu (untuk kromatografi kolom) atau jarak (untuk kromatografi planar). Analisis kromatogram memungkinkan identifikasi dan kuantifikasi komponen sampel.

8.1. Kromatogram

Kromatogram menampilkan serangkaian puncak, di mana setiap puncak idealnya mewakili satu komponen yang terpisah.

Kualitas kromatogram dinilai dari beberapa parameter:

8.2. Integrasi Puncak, Kuantifikasi, dan Kualifikasi

Perangkat lunak kromatografi modern secara otomatis melakukan analisis kromatogram:

Analisis data kromatografi yang akurat dan reproduktif sangat penting untuk validitas hasil eksperimen dan aplikasi analitis.

9. Aplikasi Luas Kromatografi

Kromatografi telah menjadi tulang punggung di banyak bidang ilmiah dan industri karena kemampuannya yang unik untuk memisahkan campuran yang kompleks.

9.1. Industri Farmasi

Kromatografi adalah teknologi inti dalam industri farmasi, dari penelitian dan pengembangan hingga kontrol kualitas dan produksi.

9.2. Analisis Lingkungan

Kromatografi memegang peran vital dalam memantau kualitas lingkungan dan mendeteksi polutan.

9.3. Industri Pangan dan Minuman

Untuk menjamin keamanan dan kualitas produk pangan, kromatografi digunakan secara ekstensif.

9.4. Bioteknologi dan Biokimia

Dalam bioteknologi, kromatografi sangat penting untuk memisahkan dan memurnikan biomolekul.

9.5. Forensik dan Klinis

Aplikasi kromatografi juga meluas ke bidang hukum dan kesehatan.

10. Tantangan dan Tren Masa Depan Kromatografi

Meskipun kromatografi telah sangat berkembang, penelitian dan pengembangan terus berlanjut untuk mengatasi tantangan yang ada dan mendorong batas-batas kemampuan analitis.

10.1. Miniaturisasi dan Portabilitas

Ada tren yang kuat menuju miniaturisasi sistem kromatografi. Ini melibatkan pengembangan kolom mikro, chip kromatografi (lab-on-a-chip), dan instrumen portabel. Keuntungannya meliputi pengurangan konsumsi pelarut (mengurangi biaya dan limbah), waktu analisis yang lebih cepat, dan kemampuan untuk melakukan analisis di lapangan atau di titik perawatan (point-of-care) tanpa perlu membawa sampel ke laboratorium pusat. Tantangannya adalah mempertahankan kinerja (resolusi dan sensitivitas) pada skala yang lebih kecil.

10.2. Teknik Hifenasi (Hyphenated Techniques)

Teknik hifenasi menggabungkan dua atau lebih teknik analitis untuk memaksimalkan informasi yang diperoleh dari sampel. Penggabungan kromatografi dengan spektrometri massa (MS) adalah contoh paling sukses.

Teknik hifenasi terus berkembang dengan integrasi detektor lain, seperti resonansi magnetik nuklir (NMR) atau spektroskopi inframerah (IR) dengan kromatografi, meskipun dengan tantangan antarmuka yang lebih besar.

10.3. Kromatografi Hijau (Green Chromatography)

Kesadaran akan dampak lingkungan mendorong pengembangan metode kromatografi yang lebih "hijau." Ini termasuk:

10.4. Otomatisasi dan Kecerdasan Buatan (AI)

Otomatisasi penuh dari persiapan sampel hingga analisis data menjadi semakin umum, meningkatkan throughput dan mengurangi variabilitas manusia. Selain itu, integrasi kecerdasan buatan (AI) dan pembelajaran mesin (machine learning) mulai diterapkan untuk optimasi metode, interpretasi data kromatografi yang kompleks (misalnya, identifikasi puncak yang tidak diketahui dalam spektrum massa), dan bahkan desain fase diam baru.

11. Kesimpulan

Kromatografi telah berevolusi dari metode pemisahan pigmen sederhana menjadi seperangkat teknik analitis dan preparatif yang tak tertandingi dalam fleksibilitas, sensitivitas, dan spesifisitasnya. Dengan beragam pilihan fase gerak, fase diam, dan detektor, kromatografi mampu memisahkan hampir semua campuran, dari molekul kecil hingga makromolekul besar, dari sampel yang paling sederhana hingga matriks biologis yang paling kompleks.

Perannya yang krusial dalam bidang farmasi, lingkungan, pangan, bioteknologi, dan forensik menunjukkan betapa pentingnya teknik ini dalam kemajuan ilmu pengetahuan dan teknologi modern. Dengan terus berinovasi dalam miniaturisasi, teknik hifenasi, pendekatan hijau, dan integrasi AI, kromatografi akan tetap menjadi fondasi yang tak tergantikan dalam kimia analitik dan mendorong batas-batas pemahaman kita tentang dunia molekuler.

Kemampuannya untuk mengungkapkan kompleksitas kimiawi suatu sampel menjadikannya alat yang esensial, tidak hanya untuk penelitian dasar tetapi juga untuk aplikasi praktis yang berdampak langsung pada kualitas hidup dan keamanan lingkungan kita.